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免疫組化:非特異性染色的八大原因

更新時(shí)間:2021-11-08點(diǎn)擊次數(shù):1514

免疫組化,免疫組織化學(xué)技術(shù)(immunohistochemistry),是一項(xiàng)利用抗原抗體反應(yīng),通過使標(biāo)記抗體的顯色劑顯色來確定組織細(xì)胞內(nèi)抗原,對(duì)蛋白定位,定性的實(shí)驗(yàn)技術(shù)。


非特異性染色的八大原因


然而,結(jié)果卻未必都是那么如意的,常常出現(xiàn)下面這種狀況,好好的一張片子染得臟臟的,這就是最常見的非特異性染色。



1. 抗體問題,真的是一分錢一分貨??!


一抗用多克隆抗體容易出現(xiàn)非特異性染色,建議用高純度,高效價(jià)的針對(duì)更具特異性抗原決定簇的單克隆抗體來解決。單克隆抗體很貴,不過結(jié)果真的很好。尤其是背景非特異性染色不會(huì)太深。真是一分價(jià)錢一分貨。一抗過期也會(huì)造成杯具,所以要注意抗體的有效期。


2. 抗體濃度過高/孵育時(shí)間過長


一抗?jié)舛忍咭彩浅霈F(xiàn)非特異性染色的常見原因。解決的辦法就是預(yù)實(shí)驗(yàn)。每次使用新抗體前應(yīng)該多做預(yù)實(shí)驗(yàn),摸索出zui理想的工作濃度,不能簡單地按照說明書來用。另一個(gè)常見原因就是孵育時(shí)間過長。解決的辦法就是定時(shí)器。加上抗體后,立刻調(diào)好定時(shí)器,提醒自己及時(shí)終止反應(yīng),就會(huì)避免這個(gè)問題。


3. DAB染色時(shí)間太長/變質(zhì)


DAB的孵育時(shí)間過長,會(huì)造成背景非特異性染色。DAB的顯色時(shí)間不是一成不變的,主要靠自己在顯微鏡下盯著,一旦出現(xiàn)淺淺的棕色的時(shí)候,就要馬上沖洗。出現(xiàn)棕色的時(shí)間過短,表明抗體濃度過高;出現(xiàn)棕色的時(shí)間過長,表明抗體濃度過低。DAB要保存于避光干燥的地方,現(xiàn)用現(xiàn)配,臨用前才加入H2O2。圖1就沖洗的有些晚了;圖2就是剛剛好,染色效果棒棒噠!



4. 內(nèi)源性酶和生物素


內(nèi)源性酶和生物素也會(huì)造成非特異性染色,特別是一些內(nèi)源性酶生物素含量豐富的組織,如肝臟,腎臟,脾臟等。處理的辦法為:滅活堿性磷酸酶:zui常用的方法是將左旋咪唑(24 mg/mL)加入底物液中,并保持PH值在7.6-8.2,即能除去大部分內(nèi)源性堿性磷酸酶;對(duì)于酸性磷酸酶,可以用50 mmol/L的酒石酸抑制;對(duì)于內(nèi)源性過氧化物酶,可以用0.9%的雙氧水來滅活。對(duì)于內(nèi)源性生物素,染色前將切片浸于25 μg/mL親和素溶液中15分鐘,PBS清洗15分鐘后即可染色。也可以24 mg/mL的卵白素封片15分鐘。


5. 組織變干


一下子染太多片子的時(shí)候,容易出現(xiàn)這種情況。解決的辦法就是不要貪多嚼不爛。一次少染幾張。還有就是試劑充分覆蓋組織,超出組織邊緣2 mm。然后用PAP筆在組織周圍畫一個(gè)圈圈,把修復(fù)液圈在里面。避免修復(fù)液流走。圈圈應(yīng)該距離組織邊緣3-4 mm。

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6. 浸泡時(shí)間過長


切片在緩沖液或修復(fù)液里面浸泡過夜,也會(huì)引起杯具。這都是偷懶的做法。但是有時(shí)候也是可以偷一下懶的。毛博的獨(dú)門秘技就是4°C冰箱。只要把容器放在4°C冰箱里,過夜*沒有問題。


7. 清洗不充分


清洗一定要充分。PBS液一定要雙蒸水新配,用之前再次測PH值。緩沖液用0.05 mol/L的Tris-HCL,0.15 mol/L的NaCl即可。如果加一點(diǎn)去垢劑Tween-20就更好了。


8. 封閉血清問題


是否選擇了正確的封閉血清。原則是選擇二抗動(dòng)物的非免疫血清,例如二抗是羊抗兔,就要選擇非免疫羊血清。用PBS稀釋為3-10%的溶液孵育切片,37°C 10-30分鐘。這里不用洗,直接甩掉即可。毛博再貢獻(xiàn)一個(gè)獨(dú)門絕招,直接用奶粉也可以。用5%的脫脂奶粉就可以了。而且效果還不錯(cuò)。怎么樣?簡單吧。


來源:解螺旋醫(yī)生科研助手 / 編輯:As素


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